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肝切除模型

簡(jiǎn)要描述:肝切除模型:肝切除對(duì)肝再生的刺激強(qiáng)度與所切除肝臟的質(zhì)量有直接的關(guān)系,切除量大于85%或小于30%均可導(dǎo)致再生緩慢。

  • 更新時(shí)間:2025-06-29
  • 訪  問  量:885
  • 價(jià)格:面議
  • 廠商性質(zhì):生產(chǎn)廠家

詳細(xì)介紹

品牌其他品牌產(chǎn)地類別國產(chǎn)
應(yīng)用領(lǐng)域綜合

肝部分切除基本以30%、50%、70%和90%肝切除為主,根據(jù)肝葉比例進(jìn)行相應(yīng)切除,但右上葉和右下葉同屬一個(gè)功能單位,兩者有一段融合共用的脈管系統(tǒng),單獨(dú)切除其中一部分容易損傷殘留肝葉脈管系統(tǒng)的通暢性。肝切除對(duì)肝再生的刺激強(qiáng)度與所切除肝臟的質(zhì)量有直接的關(guān)系,切除量大于85%或小于30%均可導(dǎo)致再生緩慢。

肝切除模型 

構(gòu)建小鼠 70%肝臟切除模型


實(shí)驗(yàn)動(dòng)物選擇:

小鼠肝臟分葉結(jié)構(gòu)明顯并都有相對(duì)獨(dú)立的肝靜脈系統(tǒng)和Glisson系統(tǒng),各肝葉比重相對(duì)固定,便于進(jìn)行不同比例肝部分切除,且其膽囊解剖更接近人類。且小鼠大部分肝切除模型是當(dāng)前研究肝臟再生的最佳模型,可用于模擬肝臟再生的起始、增殖和終止階段。

肝切除模型造模方法:

(一)用2%異氟的烷氣體麻醉小鼠。


(二)腹部消毒后,取劍突下腹部正中豎切口,長度 1.5cm-3cm,開腹時(shí)注意不要損傷腹腔器官組織,依次切開表皮、肌層及腹膜,找到肝臟,用鑷子拉開并固定兩側(cè)腹肌,充分暴露肝臟。


(三)用眼科剪游離與肝臟相關(guān)的韌帶,先后結(jié)扎肝中葉及左外側(cè)葉并切除,注意保留膽囊;結(jié)扎時(shí)要靠近肝葉基底,盡量減少肝葉的殘留和對(duì)血管的損傷,結(jié)扎時(shí)動(dòng)作要輕柔,避免撕扯到肝下的血管。

但值得注意的是,結(jié)扎中葉時(shí)線結(jié)的位置不能太靠近肝上的腔靜脈,否則會(huì)導(dǎo)致靜脈閉塞或狹窄,阻礙殘留的右葉和尾葉的血液回流,從而導(dǎo)致肝組織的壞死和再生的失敗。因此,線結(jié)的位置應(yīng)該超過膽囊,但與上腔靜脈的距離應(yīng)不小于2mm。


(四)回納剩余肝組織及腹內(nèi)容物,依次縫合關(guān)腹,縫合后再次消毒切口。術(shù)后禁食禁水6h。皮下注射5%葡萄糖的注射液替代術(shù)中蒸發(fā)損失,出血和液體移位中的液體損失,并作營養(yǎng)用,放置于37℃溫箱復(fù)溫6h。


(五)以手術(shù)結(jié)束為0h,根據(jù)分組時(shí)間點(diǎn)要求分別于術(shù)后24h、72h、7d將動(dòng)物處死,稱量并記錄各組再生肝臟的重量,取樣。肝組織收集后迅速-80℃低溫冰箱保存。

 

 

構(gòu)建肝臟缺血再灌注損傷模型


實(shí)驗(yàn)動(dòng)物選擇


缺血再灌注損傷實(shí)驗(yàn)?zāi)P投噙x用大鼠等嚙齒類動(dòng)物來建立。相對(duì)與大小鼠而言,小鼠具有飼養(yǎng)成本低、空間利用率高、藥劑消耗量小、操作同步性好等優(yōu)點(diǎn)。

動(dòng)物品系:Balb/c小鼠,雄性,周齡為6-8w

造模方法


1、 術(shù)前12h禁食,自由飲水。


2、 腹腔注射麻醉,麻醉成功后將小鼠平躺在手術(shù)的臺(tái)上膠帶固定四肢,將小鼠腹部術(shù)去毛,用碘酒和75%乙醇術(shù)區(qū)消毒。


3、 取腹正中切口1cm,打開腹腔,小心分離出肝臟供血的門靜脈和肝動(dòng)脈。

肝切除模型 

4、 用無創(chuàng)血管的夾夾閉門靜脈和肝動(dòng)脈,0.5min后,肉眼可見阻斷葉明顯變白,說明阻斷成功,用止血的鉗夾閉皮膚切口臨時(shí)關(guān)閉腹腔,將小鼠放恒溫加熱毯上保溫。


5、 完成持續(xù)缺血60min后,重新打開腹腔,迅速取出血管的夾,恢復(fù)缺血肝血流,0.5min左右可見缺血區(qū)肝臟由白色逐漸恢復(fù)為鮮紅色表明再灌注成功,逐層縫合腹腔肌肉和皮膚關(guān)閉腹腔,完成手術(shù)。待小鼠清醒后放回飼養(yǎng)室飼養(yǎng),密切關(guān)注小鼠的狀態(tài)及生存狀況并做好記錄。

 


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